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제품 매개 변수:
| 중국어 이름 | 영어 이름 | 제품 사양 | 상품 번호 |
| MTT 검사 키트 | MTT 분석 키트 | 500회 | BJ-01X6322 |
MTT는 살아있는 세포 미토콘드리아 내의 탈수소 효소에 의해 짙은 자색의 formazan 결정을 환원시켜 생성할 수 있고, 죽은 세포는 이 활성이 없다는 원리로 세포 성장을 검사하는 데 널리 사용된다.짙은 자색의 formazan 결정은 용해된 후 490nm 파장의 빛 흡수를 측정하여 그 농도를 측정할 수 있으며, 이를 통해 세포의 활력을 추측할 수 있으며, 세포 증식이 왕성할수록 흡광도가 높아진다.세포의 독성이 클수록 흡광도가 낮아진다.
상품설명:
| 제품 특징: 1. *의 포마잔 용해액을 사용하여 포마잔을 충분히 용해시켜 오차를 줄일 수 있다. 2. 배경이 낮고 민감도가 높으며 선형 범위가 넓고 반복성이 좋습니다. 3. 본 제품은 96공 세포배양판 5개를 충분히 500회 미세 공판 검사할 수 있습니다. 4.생물 활성 인자 활성 검사, 항종양 약물 선별, 세포 독성 시험, 종양 방사선 민감성 측정 등에 사용할 수 있습니다. 저장조건: 저온운송, -20 ℃ 보존 (단, 용액B도 상온운송과 보존이 가능), 유효기간 1년. 사용 방법: 다음 조작은 세포의 독성을 측정하는 실험이다. 기타 응용은 이와 유사하거나 더 간단하다 (예를 들면 성장곡선시험), 조작 절차는 이를 기초로 약간 수정하면 되기 때문에 더 이상 설명하지 않는다. 1. 세포 접종 1. 일반적인 소화법에 따라 합쳐진 단층세포를 소화하여 혈청을 함유한 배지에 수집한다. 2.200g 원심분리 5분 세포침전 수집. 3.배양기 중현세포침전으로 단세포현탁액으로 제조하여 계수한다. 4. 세포를 2.5×103개/mL~5×10개/mL 사이(세포의 성장속도에 따라 결정해야 함)로 희석한다. 성장도를 모르면 보통 1×10개/mL로 희석할 수 있다. 5. 충분한 양의 세포현액을 배양접시에 옮긴다(배총 시료 채취가 용이하다).96 공판의 MTT 검사에는 약 20 mL의 세포 현액이 필요합니다. 6. 소총으로 96공판으로 제거한 2-11열 각 구멍의 정중앙에 세포현액 200μL(정상세포에 대한)를 넣는다.종양세포의 경우 종양세포 현액 100μL와 배양기 100μL(총체적 200μL)를 넣는다.주의: 반드시 세포를 구멍의 한가운데에 넣어야 한다. 그렇지 않으면 세포가 구멍의 구석에 모여 실험에 영향을 줄 수 있다. 7. 배총으로 96공판으로 제거한 1번과 12번째 구멍에 세포현액과 같은 부피의 배지를 넣는다.1열 각 구멍은 + 배양기-세포+MTT 대조(OD 측정 시 0 조정용)로, 12열 가배지의 역할은 11열 반응에 대한 가장자리 효과의 영향을 줄이는 것이다. 8. 일반적인 세포배양방법에 따라 37 ℃ 와 5% CO2 조건에서 1~3일 부화하여 세포를 지수성장기에 진입시킨다. 2. 약물처리 9. 배양기로 약물을 8개의 대기농도로 희석한다 (대기농도를 모르면 예비시험확정이 필요하다). 일반적으로 한 약물은 3개의 평행판을 만들어야 한다. 10. 2열부터 11열까지(총 10열) 각 구멍의 배양기(세포를 건드리지 않음)를 제거하고 1열과 12열 각 구멍의 배양기를 유지한다. 11. 2열과 11열(총 2열)의 각 구멍에 200μL의 신선배지를 첨가한다. 이 구멍들은 +배지+세포-약물의 대조로 쓰인다. 12.3열부터 10열까지(총 8열) 각 구멍에 농도 경도의 측정 대기 약물 8개를 넣고, 열마다 농도의 약물을 넣는다. 13.일반적인 방법에 따라 96 공판을 37 ℃ 와 5% CO2 조건에서 일정한 시간 동안 계속 부화시키면 이 기간은 약물로 세포를 처리하는 시간이며 사용자 스스로 결정한다. 14.처리가 끝나면 2열부터 11열까지(총 10열, 모두 세포 포함) 모든 구멍에 있는 배지를 제거하고 신선배지 100μL를 추가한다. 15.매일 배양을 바꾸면 세포 수가 2-3배 증가한다(소요시간은 세포에 따라 다르다). 3. 생존세포 계수 16. 생장 말기에 1∼11열 구멍별 배지를 제거한 뒤 신선배지 100μL와 용액A(MTT 성분 포함) 10μL를 넣어 96공판을 은박으로 감싼 뒤 37℃와 CO2 5% 조건에서 4∼8시간 배양한다.참고: 용액 A는 저온에서 응고되므로 사용하기 전에 실온에 놓거나 20-25 ℃ 에서 전부 용해될 때까지 수욕하고 흔들어 사용하십시오.MTT는 발암성이 있으므로 반드시 장갑을 끼고 조작해야 한다. 17. 구멍 내 배양기(용액 A 포함)를 조심해서 빨아들인다. 배양기는 빛 흡수에 영향을 줄 수 있으므로 가능한 한 제거하는 것이 좋다. 18.구멍당 100μL 용액 B를 넣고 흔들침대에 저속으로 10분 동안 진동시켜 MTT로 형성된 formazan 결정물을 충분히 용해시킨다. 19.산물이 불안정하기 때문에 즉시 효소연면역검사기에서 490nm를 선택하여 흡광도를 측정해야 한다. 주의: 1열 각 구멍(+배지-세포+MTT 대조)으로 0을 조정한다. 20.동일하게 처리된 각 반복의 평균을 계산합니다. 21.약물농도를 가로축으로 하고 흡광도를 세로축으로 곡선을 그린다.각 처리 흡광도 절대치의 차이가 매우 크기 때문에, 일반적으로 이를 성장 억제율 (약물을 넣지 않은 제2열과 제11열의 각 구멍 데이터의 평균을 100%) 로 전환해야 하며, 이렇게 하면 IC50을 계산하여 각종 약물 처리 효과의 비교에 사용하기 편리하다.참고: 성장 커브를 측정하면 시간이 가로축이 됩니다.정상적인 성장곡선은 일반적으로 S형을 나타내고 촉진작용을 하는 경우 경사가 증가한다. |
실험 보고서:
1. 분리와 배양:
1. 무균 조건에서 1-3d령 SD 쥐의 심방 조직을 제거한 후 PBS로 이 조직 블록을 2회 세척한 후 마지막에 조직을 1mm3 정도 크기로 자른다;
2. 조직 블록에 4mL 효소 소화액 (0.1% 와 0.1% I형 콜라겐 효소) 을 첨가하여 10s 혼탁하여 37 ℃ 의 조건에서 10min 소화시킨 후 점적 파이프로 불어 단세포 현액을 만들어 자연적으로 침전시키고 상청을 수집하여 10% 의 FBS 배지 함유로 소화를 종료한 후 4 ℃ 에 배치한다;
3. 나머지 조직은 다시 3~4mL 효소 소화액을 첨가하여 10s를 혼현하고 37 ℃ 를 10min 소화한 후, 상술한 방법에 따라 상청을 수집하고 소화를 중지한 후 4 ℃ 를 배치하고, 이 단계를 2-3회 반복하여 조직 *이 소화될 때까지 한다;
4. 200개의 스테인리스강 체망으로 세포 소화액을 여과하고, 1200r/min 원심 10min, 상청을 버리고, 침전 세포는 10% FBS DMEM/F12 배지 혼현을 함유하고, 25cm2 배지병에 접종하고, 37 ℃, 5% CO2 배지 상자에 배치하여 배지한다;
5. 차속으로 벽에 1h를 붙인 후 배양기를 흡출하여 실험 수요에 따라 6공판 중 접종하여 계속 배양한다;
2. 면역형광감정:
1. 심방근세포가 80% 융합될 때까지 성장할 때 배양기를 버리고 온육한 PBS로 세포를 2회 10min씩 씻은 다음 4% 의 폴리포름알데히드로 실온조건에서 15min 세포를 고정한다.
2. PBS는 10min씩 세포를 2회 세척한 후 4 ℃ 조건에서 0.1% Triton X-100 투과막을 15min 사용한다.
3. PBS는 10min씩 세포를 2회 세척한 후 실온 조건에서 4% BSA로 세포를 30min 폐쇄한다;
4, 1: 100의 비율로 알파-actin 1항을 희석한 후 4 ℃ 냉장고에 넣어 세포를 부화시켜 밤을 보낸다;
5. PBS는 세포를 3회 씻어 매번 10min씩 1: 150의 비율로 알파-액틴에 대한 2항을 희석하고 37 ℃ 조건에서 1h를 배치한다.
6. PBS로 10min씩 3회 헹구고, 마지막으로 거꾸로 형광현미경 아래에서 이미지를 관찰하고 사진을 찍는다.
배양 작업 단계:
1. 덮개 핀셋으로 덮개를 에탄올 75%에서 꺼내 무균 실크 천으로 깨끗하게 닦고 거즈를 사용하지 마십시오.
2. 뚜껑 슬라이스를 6공 배양판(구멍당 1개) 또는 배양접시에 가볍게 넣는다(평평한 접시당 2~3장 가능).
3.자외선등으로부터 직사범위내 20~30센치메터 떨어진 곳에서 2~3시간 조사한다.
4. 계수된 세포부상액을 배양판에 옮겨 캡슐을 * 배양액에 담그기;
5. 배양판을 5% CO2 수욕 부화상자에서 37 ℃ 로 2-3일 부화시키고, 밀착 세포가 커버 배양판 바닥의 2/3 면적까지 성장할 때 배양판을 제거하고, 커버 핀셋으로 커버 볼륨을 가볍게 제거하며, 증류수로 헹군 후 빠른 고정 및 면역 세포 화학 검사를 진행할 수 있다.
실험 요점 및 설명:
1.이 방법은 스텐트 세포 배양에 적용되며 스텐트 세포 배양에는 적용되지 않으며, 스텐트 세포는 스텐트 방법을 사용할 수 있습니다.
2.사용된 덮개 유리는 양질의 유리여야 하며 크롬산 세액 처리를 거쳐야 한다;
3.뚜껑은 매우 얇고 깨지기 쉬우므로 뚜껑을 벗길 때 동작이 가볍다;
4.생장 상태가 일치하는 세포가 더 필요하다면 비교적 큰 배양접시를 사용할 수 있지만, 배양액의 낭비를 피하고 오염 확률을 높이기 위해 너무 커서는 안 된다;
5. 세포접벽의 성장능력이 비교적 떨어지면 덮개를 0.5% 남짓한 폴리라이신 용액에 5-10분 정도 담가 자연적으로 말린다.
운영 포인트:
1) 배양기를 37℃ 수욕솥에 예열한다.15mL 무균의 원심관을 준비하고 예열배지 8mL를 넣는다.
2) 액체 질소 탱크에서 냉동 세포를 꺼내어 37 ℃ 의 수욕솥에 빠르게 넣고 복온한다 (깨끗한 비커를 준비하여 37 ℃ 의 물을 가득 채울 수 있다. 세포 냉동 보관관을 꺼낸 후 신속하게 비커에 넣은 후 점차 수욕솥으로 옮긴다).냉동보관소를 가볍게 흔들어 세포가 1~2min 이내*해동할 수 있도록 하고, 세포가 가장 손상되기 쉬운 온도 구간(-5~0℃)을 빨리 통과할 수 있도록 한다.동존관 관구가 물에 들어가지 않으면 안 되며 BRL (대쥐 간세포) 은 오염을 일으키지 않도록 주의해야 한다.
3) 75% 알코올로 냉동보관소를 닦은 후 다시 초정대 안에 놓고 관내 세포를 준비된 원심관 안으로 옮겨 액체를 가볍게 불어 세포를 균일하게 분산시켜 DMSO 농도를 낮추고 불 때 기포가 생기지 않도록 한다.신선한 배양기로 파이프 벽을 2회 씻어 모두 원심관 안으로 옮긴다.
4) 800rpm 원심분리 5min, 상청을 버리고 신선한 배양기를 넣고 불어서 세포현액으로 만든다.
5) 세포현액을 T25 세포병에 옮겨 적당량의 배양기를 보충하고 세포병을 가볍게 흔들어 세포분포를 균일하게 하고 온상자에 넣어 배양한다.
6) 다음 날 세포의 밀착 생장 상황을 관찰하고 신선한 배양기로 바꾸어 죽은 세포를 제거한다.계속 배양하고 세포가 80~90% 까지 자라면 합류할 때 정상적으로 대물림된다.일반적으로 갓 소생한 세포는 2~3회 대물림을 거쳐 세포의 활력이 회복된 후에야 후속 실험을 진행할 수 있다.
혈관 긴장소 1 전환 효소 억제제 항체
옹항 쇠망 전사 인자 항체
알파-1 항췌장
ATP 결합 단백질 가족 6 항체
삼린산 아데노신 결합 허아 가족 G1 항체
지연소 수체 2 항체
ANGEL1 단백질 항체
ANGEL2 단백질 항체
ANKLE2 단백질 항체
고환 특이성 앵커 단백질 1 항체
앵커 단백질 반복 구조 도메인 단백질 13B 항체
앵커 단백질 반복 구조 도메인 단백질 20A1 항체
앵커 단백질 반복 구조 도메인 단백질 20A3 항체
앵커 단백질 중복 구조 도메인 단백질 22 항체
앵커 단백질 중복 구조 도메인 단백질 50 항체
BC-020 (인간 유방암 세포) 5 × 106cells/병 × 2
BC-021(인간유방암세포) 5×106cells/병×2
BC-022(인간유방암세포) 5×106cells/병×2
BE(2)-M17(인간 신경모세포 종양세포) 5×106cells/병×2
BGC-803(인위암세포) 5×106cells/병×2
C918(인안맥락흑색종세포) 5×106cells/병×2
CAL-27(인설린암세포) 5×106cells/병×2
LS 180(인간 결장선 암세포) 5×106cells/병×2
CNE-2Z(인비인두암세포) 5×106cells/병×2
MTT 검사 키트COLO 201(인결직장선암세포) 5 × 106cells/병 × 2
CW-2(인간결장암세포) 5×106cells/병×2
CRT(인간 신경교종 세포) 5 × 106cells/병 × 2
D283 Med (인간 뇌수 모세포 종양 세포) 5 × 106cells/병 × 2
EA.hy926 (인간 배꼽 정맥 세포 융합 세포) 5 × 106cells/병 × 2
ECV-304(인간 배꼽 정맥 내피세포) 5 × 106cells/병 × 2
EJ(인방광암세포) 5×106cells/병×2
H-97(인고전이 간암세포) 5×106cells/병×2